抗体内化
比较靶标阳性和阴性样品,记录时间序列。结合抗体结合活性,判断荧光变化是否与受体介导的内化相关。
用于抗体内化、细胞内吞与酸化研究。
pH560、pH630 与 pHAb,提供 6 款反应性染料及 1 款配套标记试剂。
先确认检测波段,再按目标分子的伯胺或游离巯基选择反应形式。
| 产品 | 反应形式 | 光谱峰值 nm | 包装规格 | 产品详情 |
|---|---|---|---|---|
| pH560 Red TFP 酯 QH-17-1005 | TFP | 560 / 585 nm | 100 μg / 1 mg | |
| pH560 Red 马来酰亚胺 QH-17-1004 | Maleimide | 560 / 585 nm | 100 μg / 1 mg | |
| pH630 Deep Red TFP 酯 QH-17-1001 | TFP | 640 / 655 nm | 100 μg / 1 mg | |
| pH630 Deep Red 马来酰亚胺 QH-17-1002 | Maleimide | 640 / 655 nm | 100 μg / 1 mg | |
| pHAb 胺反应型染料 QH-17-2001 | NHS Ester | 532 / 560 nm* | 250 μg / 1 mg | |
| pHAb 巯基反应型染料 QH-17-2002 | Maleimide | 532 / 560 nm* | 250 μg / 1 mg |
* pHAb 为吸收 / 发射峰值;其余为激发 / 发射峰值。
荧光随环境酸化增强。读数同时受标记量、内化量、局部 pH 和采集条件影响;比较实验时应保持标记度和仪器设置一致。
比较靶标阳性和阴性样品,记录时间序列。结合抗体结合活性,判断荧光变化是否与受体介导的内化相关。
把探针与待追踪分子偶联后再检测。使用独立的定位或酸化对照,区分摄取量变化和细胞器酸度变化。
按实际激发、发射峰和滤光片带宽安排通道。采用单染对照评估串色,避免把仪器自动增益变化当成样品差异。
pH560 / pH630 TFP 酯与 pHAb NHS Ester。适用于含可用伯胺的抗体或蛋白,标记前去除竞争性胺和载体蛋白。
pH560 / pH630 Maleimide 与 pHAb 巯基染料。确认可用巯基,评价还原对蛋白结构的影响,并处理竞争性巯基试剂。
比较靶标阳性和阴性样品,记录时间序列。结合抗体结合活性,判断荧光变化是否与受体介导的内化相关。
把探针与待追踪分子偶联后再检测。使用独立的定位或酸化对照,区分摄取量变化和细胞器酸度变化。
按实际激发、发射峰和滤光片带宽安排通道。采用单染对照评估串色,避免把仪器自动增益变化当成样品差异。
比较 pHAb、pH560 Red、pH630 Deep Red 与人源抗体配套标记试剂的检测通道和反应路线,结合样品状态安排内化检测。
NHS 酯用于伯胺标记,马来酰亚胺用于游离巯基标记。结合抗体可用基团、缓冲液与还原处理,判断两种路线的适用条件,并列出标记前应提供的样品信息。
DOL 表示纯化后平均每个抗体结合的染料分子数。本文说明如何用 A280、染料吸光度和对应消光系数计算标记度,排查游离染料、错误校正和过度标记,并结合实际染色表现判断标记结果。
用对照区分靶向摄取、非特异摄取和酸化变化;明确荧光读数能回答的问题。
按“无细胞响应—结合—细胞读数”定位问题,避免一开始就增加染料或抗体用量。
针对 QH-17-1003 核对液体制剂、抗体适用性和背景对照,避免套用游离染料流程。
以下为方法与应用研究,所用试剂见各篇原文,不作为启和产品的验证数据。
Nath N, et al. · J Immunol Methods. 2016;431:11–21.
Berguig GY, et al. · Mol Pharm. 2012;9(12):3506–3514.
Jin H, et al. · Oncoimmunology. 2021;10(1):1958590.
Liao-Chan S, et al. · PLoS One. 2015;10(4):e0124708.
点击所需资料,留下接收邮箱;申请 CoA 时请提供产品批号。
QH-17-1005
QH-17-1004
QH-17-1001
QH-17-1002
QH-17-2001
QH-17-2002
QH-17-1003
先看仪器通道,再看标记对象。pH560 的激发/发射峰为 560/585 nm,pH630 为 640/655 nm;pHAb 说明书列出的吸收/发射峰为 532/560 nm。确定波段后,再按伯胺或游离巯基选择反应形式。
查看相关技术文章 →TFP 和 NHS Ester 用于含可接近伯胺的抗体或蛋白;Maleimide 用于可接近的游离巯基。选择巯基路线前,要确认样品是否已有可用巯基,以及还原是否会影响蛋白结构和结合活性。
查看相关技术文章 →六款反应性染料需要先标记目标分子并去除游离染料,再用于细胞检测。anti-human 标记试剂则按专用流程先与待测人源抗体混合。它们都不是直接加入细胞即可使用的通用胞内 pH 探针。
不能统一配制。pH560、pH630 反应性染料使用无水 DMSO 或 DMF;pHAb 使用 DMSO/水(1:1)。anti-human 是液体制剂,无需复溶,也不按游离染料方式配制。
查看相关技术文章 →保存要求有差别。pH560、pH630 反应性染料按说明避光、干燥保存于 −20°C;anti-human 液体试剂也在 −20°C 避光保存。pHAb 干态染料在 −30°C 至 −10°C 可保存 1 个月,长期保存需低于 −65°C。
不一定。信号还受局部 pH、标记度和细胞数量影响。比较不同抗体时,应同时记录结合活性与标记度;需要区分摄取和酸化时,增加独立的胞内定位或摄取读数。
查看相关技术文章 →不能直接换算。单通道强度同时受探针量和酸度影响。绝对 pH 测量需要合适的参照读数,并在实际检测体系中校准;产品曲线不能代替细胞实验校准。
查看相关技术文章 →先核对通道和采集设置,再检查偶联物在酸性条件下是否有响应。若酸性响应正常,再检查标记后结合活性、靶标表达和细胞状态。这样可以分开判断探针、检测系统和细胞实验的问题。
查看相关技术文章 →申请说明书时,可附上抗体类型和检测需求。
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